Análise fitoquímica e potencial antimicrobiano e antifúngico de extratos e frações de Poincianella bracteosa
PDF (English)

Palavras-chave

caatinga
atividade antimicrobiana
prospecção química

Como Citar

Santana, L. G. A., Passos, M. M. da S., Fernandes, E. P., Silva, P. dos S., Gualberto, S. A., & de Carvalho, S. A. (2026). Análise fitoquímica e potencial antimicrobiano e antifúngico de extratos e frações de Poincianella bracteosa. Eclética Química, 51, e–1536. https://doi.org/10.26850/1678-4618.eq.v51.2026.e1536

Resumo

A Caatinga é um bioma brasileiro com grande diversidade vegetal e significativo potencial econômico e farmacológico. É uma valiosa fonte de recursos medicinais, com muitas espécies utilizadas na medicina popular. O estudo sobre Poincianella bracteosa destacou suas propriedades medicinais, como ação anti-inflamatória e antimicrobiana. As atividades antimicrobianas de extratos brutos e frações obtidas de diferentes partes da planta foram avaliadas contra microrganismos patogênicos. Os extratos foram obtidos por meio de percolação exaustiva com solução hidroalcoólica a 70% e fracionados com solventes de menor polaridade, resultando em frações de hexano, diclorometano e acetato de etila. As frações mostraram maior eficácia do que os extratos brutos, com a fração de diclorometano da raiz exibindo a maior atividade inibitória, com uma concentração inibitória mínima de 0,03 mg/mL contra Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus e Pseudomonas aeruginosa. Esses resultados indicam o potencial antibacteriano da Poincianella bracteosa.

https://doi.org/10.26850/1678-4618.eq.v51.2026.e1536
PDF (English)

Referências

Auricchio, M. T.; Bacchi, E. M. Leaves of Eugenia uniflora L. (Surinam Cherry): pharmacobotanical, chemical, and pharmacological properties. Rev. Inst. Adolfo Lutz. 2003, 62 (1), 55–61. https://doi.org/10.53393/rial.2003.62.34958

Bruning, M. C. R.; Mosegui, G. B. G.; Vianna, C. M. M. The use of phytotherapy and medicinal plants in basic health units in the municipalities of Cascavel and Foz do Iguaçu – Paraná: The perspective of healthcare professionals. Ciênc. Saúde Coletiva. 2011, 17, 2675–2685. https://doi.org/10.1590/S1413-81232012001000017

Castro, A. S.; Cavalcante, A. Flowers of the Caatinga. Ministry of Science, Technology, and Innovation, National Institute of the Semi-Arid. Bilingual, Campina Grande. Publisher: National Institute of the Semi-Arid, 2010.

Coradin, L.; Camillo, J.; Pareyn, F. G. C. Espécies nativas da flora brasileira de valor econômico atual ou potencial: plantas para o futuro: região Nordeste. Ministério do Meio Ambiente, 2018.

Couto, A. C. F.; Araújo, I. K. P.; Lopes, A. P.; Couto, L. M. F. M. C. B.; Santos, P. I. B.; Sousa, R. M. S.; Costa, M. W. S.; Nascimento, F. D. F.; Oliveira, M. D. A.; Júnior, J. S. C. et al. Antimutagenic activity and identification of antioxidant compounds in the plant Poincianella bracteosa (Fabaceae). Rev. Biol. Trop. 2019, 67, 1103–1113. https://doi.org/10.15517/rbt.v67i6.33883

Cowan, M. M. Plant products as antimicrobial agents. Clin. Microbiol. Rev. 1999, 12 (4), 564–582. https://doi.org/10.1128/cmr.12.4.564

Cruz, R. C. D.; Silva Carvalho, K.; Cunha, S. L.; Gualberto, S. A.; Macedo, G. E. L. Bioactivity of the root of Poincianella bracteosa (Tul.) LP Queiroz (Fabaceae) on larvae of Aedes aegypti (Linnaeus, 1762) (Diptera: Culicidae). Rev. Bras. Biociências. 2015, 13 (4), 259–264.

Cushnie, T. T.; Lamb, A. J. Recent advances in understanding the antibacterial properties of flavonoids. Int. J. Antimicrob. Agents. 2011, 38 (2), 99–107. https://doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2011.02.014

Davoodi, H.; Esmaeili, S.; Mortazavian, A. M. Effects of milk and milk products consumption on cancer: A review. Compr. Rev. Food Sci. 2013, 12, 249–264. https://doi.org/10.1111/1541-4337.12011

Denardin, C. C.; Hirsch, G. E.; Rocha, R. F.; Vizzotto, M.; Henriques, A. T.; Moreira, J. C. F.; Guma, F. T. C. R.; Emanuelli, T. Antioxidant capacity and bioactive compounds of four Brazilian native fruits. J. Food Drug Anal. 2015, 23, 387–398. https://doi.org/10.1016/j.jfda.2015.01.006

Felhi, S.; Hajlaoui, H.; Ncir, M.; Bakari, S.; Ktari, N.; Saoudi, M.; Gharsallah, N.; Kadri, A. Nutritional, phytochemical, and antioxidant evaluation and FT-IR analysis of freeze-dried extracts of Ecballium elaterium fruit juice from three localities. Food Sci. Technol. 2016, 36, 646–655. https://doi.org/10.1590/1678-457X.12916

Figueredo, C. A.; Dantas Gurgel, I. G.; Gurgel Junior, G. D. A política nacional de plantas medicinais e fitoterápicos: Construção, perspectivas e desafios. Physis. 2014, 24, 381–400. https://doi.org/10.1590/S0103-73312014000200004

Gallego, M. G.; Rodríguez, T.; Rodríguez, I.; Almajano, M. P. Analytical characterization of polyphenols from Tara and Caesalpinia decapetala as stabilizers of O/W emulsions. J. Food Sci. 2016, 81, C2676–C2685. https://doi.org/10.1111/1750-3841.13502

Gershenzon, J.; Dudareva, N. The function of terpene natural products in the natural world. Chem. Biol. 2007, 3 (7), 408–414. https://doi.org/10.1038/nchembio.2007.5

Havsteen, B. H. The biochemistry and medical significance of flavonoids. Pharmacol. Ther. 2002, 96 (2-3), 67–202. https://doi.org/10.1016/s0163-7258(02)00298-x

Hoffmann-Ribani, R.; Rodriguez-Amaya, D. B. Otimização de método para determinação de flavonóis e flavonas em frutas por cromatografia líquida de alta eficiência utilizando delineamento estatístico e análise de superfície de resposta. Quím. Nova. 2008, 31 (6), 1378–1384. https://doi.org/10.1590/S0100-40422008000600020

Instituto Brasileiro do Meio Ambiente e dos Recursos Naturais Renováveis (IBAMA). Monitoramento dos biomas brasileiros: bioma caatinga. Ministério do Meio Ambiente, 2010.

Karina, N. C. C.; Wolschick, D.; Leite, R. R. S.; Andrade, I. M.; Magalhães, J. A.; Mayo, S. J. Ethnobotanical and ethnoveterinary study of medicinal plants used in the municipality of Bom Princípio do Piauí, Piauí, Brazil. J. Med. Plants Res. 2016, 10, 318–330. https://doi.org/10.5897/JMPR

Majolo, F.; Bitencourt, S.; Monteiro, B. W.; Haute, G. V.; Alves, C.; Silva, J.; Pinteus, S.; Santos, R. C. V.; Torquato, H. F. V.; Paredes-Gamero, E. J.; Rodrigues de Oliveira, J.; Souza, C. F. V.; Pedrosa, R.; Stefan, L.; Goettert, M. I. Antimicrobial and antileukemic effects: In vitro activity of Calyptranthes grandifolia aqueous leaf extract. J. Toxicol. Environ. Health Part A. 2020, 83, 289–301. https://doi.org/10.1080/15287394.2020.1753606

Marinova, D.; Ribarova, F.; Atanassova, M. Total phenolics and flavonoids in Bulgarian fruits and vegetables. JU Chem. Metal. 2005, 40 (3), 255–260.

Marmitt, D. J.; Bitencourt, S.; Silva, A. C.; Rempel, C.; Goettert, M. I. Medicinal plants used in Brazil public health system with neuroprotective potential – A systematic review. Bol. Latinoam Caribe Plant Med. Aromat. 2018, 17, 84–103.

Matos, F. J. A. Introduction to Experimental Phytochemistry. Edições UFC, 2009.

Mello, J. P. C.; Santos, S. C. Tannins. In Pharmacognosy: from plant to medicine. Simões, C. M. O.; Schenkel, E. P.; Gosmann, G., Eds.; Ed. UFRGS, 2004, pp. 615–656.

Monteiro, J. M.; Sousa, J. S. N.; Neto, E. M. F. L.; Scopel, K.; Trindade, E. F. Does total tannin content explain the use value of spontaneous medicinal plants from the Brazilian semi-arid region? Braz. J. Pharmacogn. 2014, 24, 116–123. https://doi.org/10.1016/j.bjp.2014.02.001

National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS). Performance Standards for Antimicrobial Disk and Dilution Susceptibility Tests for Bacteria Isolated from Animals: Tentative Standards. NCCLS, 1997.

Nunes, H. L.; Tuttis, K.; Serpeloni, J. M.; Nascimento, J. R.; Rocha, C. Q.; Silva, V. A. O.; Lengert, A. V. H.; Reis, R. M.; Cólus, I. M. S. Characterization of the in vitro cytotoxic effects of brachydins isolated from Fridericia platyphylla in a prostate cancer cell line. J. Toxicol. Environ. Health Part A. 2020, 83, 547–558. https://doi.org/10.1080/15287394.2020.1784339

Oliveira, J. T.; Barbosa, M. C. S.; Camargos, L. F.; Silva, I. V. G.; Varotti, F. P.; Silva, L. M.; Moreira, L. M.; Lyon, J. P.; Santos, V. J. S. V.; Santos, F. V. Digoxin reduces the mutagenic effects of mitomycin C in human and rodent cell lines. Cytotechnology. 2017, 69, 699–710. https://doi.org/10.1007/s10616-017-0078-3

Oyenihi, A. B.; Smith, C. Are polyphenol antioxidants at the root of medicinal plant anti-cancer success? J. Ethnopharmacol. 2019, 229, 54–72. https://doi.org/10.1016/j.jep.2018.09.037

Parvaiz, M. A.; Khalid Hussain, S.; Khalid, N. H.; Iram, N.; Hussain, Z.; Ali, M. A. A review: Medicinal importance of Glycyrrhiza glabra L. (Fabaceae family). Global J. Pharmacol. 2014, 8 (1), 8–13. https://doi.org/10.5829/idosi.gjp.2014.8.1.81179

Pereira, M. L.; Monteiro, C. N.; Siqueira, C. F. N.; Ribeiro, M. S.; Lopes, A. P.; Sousa, R. M. S.; Oliveira, M. D. A.; Júnior, J. S. C.; Martins, F. A.; Almeida, P. M. Evaluation of effects of Poincianella bracteosa (Tul.) L.P. Queiroz leaves in Allium cepa and Mus musculus. Biotechnol. Histochem. 2020, 95, 1–11. https://doi.org/10.1080/10520295.2020.1719197

Sant’ana, A. E. G.; Araújo, E. L.; Moura, A. N.; Sampaio, E. S. B.; Gestinari, L. M. S.; Carneiro, J. M. T. Biodiversity, Conservation, and Sustainable Use of the Flora of Brazil. Imprensa Universitária: UFRPE, 2002.

Santos, I.; Cruz, R. C.; Carvalho, K.; Silva, S. L.; Gualberto, S. Bioatividade de extratos aquosos da parte aérea de Poincianella bracteosa sobre larvas de Aedes aegypti. Enciclopédia Biosfera. 2015, 11 (21), 2908–2915.

Saraiva, A. M.; Saraiva, C. L.; Gonçalves, A. M.; Soares, R. R.; Mendes, F. D. O.; Cordeiro, R. P.; Xavier, H. S.; Pisciottano, M. N. C. Antimicrobial activity and bioautographic study of anti-staphylococcal components of Caesalpinia pyramidalis Tull. Rev. Bras. Ciênc. Farmacêuticas. 2012, 48, 147–154. https://doi.org/10.1590/S1984-82502012000100016

Shukla, S.; Mehta, A. Antioxidant, total phenolics and total flavonoid content of the aqueous extract of Caesalpinia bonducella seeds. Warasan Khana Witthayasat Maha Witthayalai Chiang Mai. 2017, 44, 929–938.

Simões, C. M. O.; Schenkel, E. P.; Gosmann, G.; Mello, C. P.; Mentz, L. A.; Petrovick, P. R. Pharmacognosy: from plant to medicine. Ed. UFRGS, 2004.

Skowyra, M.; Falguera, V.; Gallego, G.; Peiró, S.; Almajano, M. P. Antioxidant properties of aqueous and ethanolic extracts of tara (Caesalpinia spinosa) pods in vitro and in model food emulsions. J. Sci. Food Agric. 2014, 94, 911–918. https://doi.org/10.1002/jsfa.6335

Słoczyńska, K.; Powroźnik, B.; Pękala, E.; Waszkielewicz, A. M. Antimutagenic compounds and their possible mechanisms of action. J. Appl. Genet. 2014, 55, 273–285. https://doi.org/10.1007/s13353-014-0198-9

Sousa, J. A.; Prado, L. D. S.; Alderete, B. L.; Boaretto, F. B. M.; Allgayer, M. C.; Miguel, F. M.; Sousa, J. T.; Marroni, N. P.; Brodt Lemes, M. L.; Silva Corrêa, D.; Barros Falcão Ferraz, A.; Picada, J. N. Toxicological aspects of Campomanesia xanthocarpa Berg. associated with its phytochemical profile. J. Toxicol. Environ. Health, Part A. 2019, 82 (1), 62–74. https://doi.org/10.1080/15287394.2018.1562392

Souza, C. A. S.; Andrade, W. M. G.; Ramos, T. S.; Filho, A. J. S.; Freitas, A. L.; Lima, T. C.; Antoniolli, A. R.; Silva, W. B.; Silva, F. A. Medicinal plants in basic care: A study of clinical practice. Pharmacogn. J. 2019, 11, 796–802. https://doi.org/10.5530/pj.2019.11.127

Starfield, B. Primary care: an increasingly important contributor to effectiveness, equity, and efficiency in health services. SESPAS Report 2012. Gaceta Sanitaria. 2012, 26, 20–26. https://doi.org/10.1016/j.gaceta.2011.10.009

Szopa, A.; Ekiert, R.; Ekiert, H. Current knowledge of Schisandra chinensis (Turcz.) Baill. (Chinese magnolia vine) as a medicinal plant species: A review on the bioactive components, pharmacological properties, analytical and biotechnological studies. Phytochem. Rev. 2017, 16, 195–218. https://doi.org/10.1007/s11101-016-9470-4

Teixeira, J. B. P.; Barbosa, A. F.; Gomes, C. H. C.; Eiras, N. S. V. A Fitoterapia no Brasil: da Medicina Popular à Regulamentação pelo Ministério da Saúde. Universidade Federal de Juiz de Fora, 2011.

Tomi, F.; Barzalona, M.; Casanova, J.; Louro, F. Chemical variability of the leaf oil of 113 hybrids from Citrus clementina (Commun) × Citrus deliciosa (Willow Leaf). Flavour Fragrance J. 2008, 23, 152–163. https://doi.org/10.1002/ffj.1867

Tuttis, K.; Costa, D. L. M. G.; Nunes, H. L.; Specian, A. F. L.; Serpeloni, J. M.; Santos, L. C.; Varanda, E. A.; Vilegas, W.; Martínez-Lopez, W.; Cólus, I. M. D. S. Pouteria ramiflora (Mart.) Radlk. extract: Flavonoids quantification and chemopreventive effect on HepG2 cells. J. Toxicol. Environ. Health Part A. 2018, 81 (16), 792–804. https://doi.org/10.1080/15287394.2018.1491911

Yang, L.; Wen, K.-S.; Ruan, X.; Zhao, Y.-X.; Wei, F.; Wang, Q. Response of plant secondary metabolites to molecules. Molecules. 2018, 23 (4), 1–26. https://doi.org/10.3390/molecules23040762

Zhumashova, G.; Kukula-Koch, W.; Koch, W.; Baj, T.; Sayakova, G.; Shukirbekova, A.; Głowniak, K.; Sakipova, Z. Phytochemical and antioxidant studies on a rare Rheum cordatum Losinsk. species from Kazakhstan. Oxid. Med. Cell Longevity. 2019, 2019, 5465463. https://doi.org/10.1155/2019/5465463

Creative Commons License
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Copyright (c) 2026 Eclética Química

Métricas

Carregando Métricas ...